دوره 5، شماره 2 - ( 6-1397 )
جلد 5 شماره 2 صفحات 117-106 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Ghorbani Salkuyeh P, Sohani M M, Abedi A. Negative control of Strictisidine synthase like-7 gene on salt stress resistance in Arabidopsis thaliana L.. nbr 2018; 5 (2) :106-117
URL: http://nbr.khu.ac.ir/article-1-3027-fa.html
URL: http://nbr.khu.ac.ir/article-1-3027-fa.html
قربانی سالکویه پردیس، سوهانی محمدمهدی، عابدی امین. نقش کنترل منفی ژن شبه استریکتوسیدین سینتاز-7 در مقاومت گیاه آرابیدوپسیس تالیانا به تنش شوری . یافته های نوین در علوم زیستی. 1397; 5 (2) :106-117
دانشگاه گیلان، رشت
چکیده: (5582 مشاهده)
ژنهای شبهاستریکتوسیدین سینتاز یک خانواده ژنی آرابیدوپسیس است که ژنهای اورتولوگ آنها در بقیۀ گیاهان کدکنندۀ آنزیم کلیدی مسیر بیوسنتزی ایندول آلکالوئیدهای مونوترپن هستند. بیان ژن SSL7 آرابیدوپسیس بلافاصله پس از تیمار با مولکول های پیام رسانی نظیر SA، متیل جازمونات و اتیلن القا می شود. در این آزمایش به منظور مطالعۀ کارکرد ژن شبه استریکتوسیدین سینتاز - 7 (SSL7) از ژنوتیپ وحشی گیاه آرابیدوپسیس تالیاناCol-0 (شاهد) و لاین سرکوب شدۀ ژن SSL7 (ssl7) از طریق درج T-DNA استفاده شد. تحلیل داده ها برمبنای آزمایش فاکتوریل در قالب طرح کاملاً تصادفی انجام شد. فاکتورها شامل دو ژنوتیپ و پنج سطح شوری شامل صفر، 50، 100، 150 و 200 میلی مولار NaCl بود. سرکوب ژن SSL7 در جهش یافته ssl7 با استفاده از qRT-PCR تأیید شد. بیان ژن های واکنش گر به تنش شوری شامل P5CS1، NCED3، AAO3 و RD29A در زمانهای 3 و 6 ساعت پس از اعمال تیمار NaCl در غلظتmM 150 نشان داد که چهار ژن مذکور در موتانت ssl7 در هر دو زمانِ پس از تیمار میزان بیان بالاتری نسبت به مقدار بیان در ژنوتیپ Col-0 نشان دادند. میزان فعالیت تعدادی از آنزیم های آنتیاکسیدان در غلظت های مختلف NaCl در هر دو ژنوتیپ اندازه گیری شد. میزان فعالیت آنزیم‌های پراکسیداز (POD)، آسکوربات پراکسیداز (APX) و سوپر اکسید دیسموتاز (SOD) در موتانت ssl7 به طور معنی داری در سطح احتمال 1 درصد بیشتر از Col-0 بوده است. برعکس، فعالیت آنزیم کاتالاز (CAT) در موتانت کاهش یافت. بنابراین، نتایج نشان داد که ژن SSL7 احتمالاً در مسیر مربوط به پاسخ به تنش شوری وابسته به سالیسیلیک اسید در گیاه آرابیدوپسیس نقش دارد و میتواند به طریق کنترل منفی عمل کند.
واژه‌های کلیدی: آنزیم های آنتی اکسیدان، خاموشی ژن، ژنتیک معکوس، ژن های واکنش گر به تنش، لاین سرکوب شده T-DNA
نوع مطالعه: مقاله پژوهشی |
موضوع مقاله:
علوم جانوری
دریافت: 1396/9/19 | ویرایش نهایی: 1400/3/11 | پذیرش: 1396/9/19 | انتشار: 1396/9/19 | انتشار الکترونیک: 1396/9/19
دریافت: 1396/9/19 | ویرایش نهایی: 1400/3/11 | پذیرش: 1396/9/19 | انتشار: 1396/9/19 | انتشار الکترونیک: 1396/9/19
فهرست منابع
1. Beauchamp, C. and Fridovich, I. 1971. Superoxide dismutase: improved assays and an assay applicable to acrylamide gels. – Anal. Biochem. 44: 276. [DOI:10.1016/0003-2697(71)90370-8]
2. Bouché, N. and Bouchez, D. 2001. Arabidopsis gene knockout: phenotypes wanted. – Curr. Opin. Plant Biol. 4: 111-117. [DOI:10.1016/S1369-5266(00)00145-X]
3. Chalfun-Junior, A., Mes, J.J., Mlynárová, L., Aarts, M. G. and Angenent, G.C. 2003. Low frequency of T-DNA based activation tagging in Arabidopsis is correlated with methylation of CaMV 35S enhancer sequences. – FEBS Letters. 555: 459-463. [DOI:10.1016/S0014-5793(03)01300-0]
4. Denness, L., Mckenna, J.F., Segonzac, C., Wormit, A., Madhou, P., Bennett, M., Mansfield J., Zipfel C. and Hamann T. 2011. Cell wall damage-induced lignin biosynthesis is regulated by a reactive oxygen species and jasmonic acid-dependent process in Arabidopsis. – Plant Physiol. 156: 1364-1374. [DOI:10.1104/pp.111.175737]
5. Dhindsa, R.S. and Matowe, W. 1981. Drought tolerance in two mosses: correlated with enzymatic defence against lipid peroxidation. – J. Exp. Bot. 32: 79-91. [DOI:10.1093/jxb/32.1.79]
6. Fabbri, M., Delp, G., Schmidt, O. and Theopold, U. 2000. Animal and plant members of a gene family with similarity to alkaloid-synthesizing enzymes. – Biochem. Biophys. Res. Commun. 271: 191-196. [DOI:10.1006/bbrc.2000.2598]
7. Fahad, S. and Bano, A. 2012. Effect of salicylic acid on physiological and biochemical characterization of maize grown in saline area. – Pak. J. Bot. 44: 1433–1438.
8. Gill, S.S. and Tuteja, N. 2010. Reactive oxygen species and antioxidant machinery in abiotic stress tolerance in crop plants. – Plant Physiol. Biochem. 48: 909-930. [DOI:10.1016/j.plaphy.2010.08.016]
9. Ham, J.H., Kim, M.G., Lee, SY. and Mackey, D. 2007. Layered basal defenses underlie non-host resistance of Arabidopsis to Pseudomonas syringae pv. phaseolicola. – Plant J. 51: 604-616. [DOI:10.1111/j.1365-313X.2007.03165.x]
10. Hamann, T. 2012. Plant cell wall integrity maintenance as an essential component of biotic stress response mechanisms. – Front. Plant Sci. 3: 77-83. [DOI:10.3389/fpls.2012.00077]
11. Katam, R., Panthee, D.R., Bhattacharya, A., Basha, S. M. and Kole, C. 2011. Arabidopsis. In: Cole C. (ed). Wild Crop Relatives: Genomic and Breeding Resources 1: 1-16.
12. Khan, M.A. and Ungar, I.A. 2001. Seed germination of triglochin maritime as influenced by salinity and dormancy relieving compounds. – Biol. Plant. 44: 301-303. [DOI:10.1023/A:1010272030538]
13. Krysan, P.J., Young, J.C. and Sussman, M.R. 1999. T-DNA as an insertional mutagen in Arabidopsis. Plant Cell. 11: 2283-2290. [DOI:10.1105/tpc.11.12.2283]
14. Livak, K.J. and Schmittgen, T.D. 2001. Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2−ΔΔCT method. – Methods 25: 402-408. [DOI:10.1006/meth.2001.1262]
15. Malinovsky, F.G., Fangel, J.U. and Willats, W.G. 2014. The role of the cell wall in plant immunity. – Front. Plant Sci. 5: 178-196. [DOI:10.3389/fpls.2014.00178]
16. Nakano, Y. and Asada, K. 1987. Purification of ascorbate peroxidase in spinach chloroplasts; its inactivation in ascorbate- depleted medium and reactivation by monodehydroascorbate radical. –Plant Cell Physiol. 28: 131-140.
17. Parida, A.K. and Das, A.B. 2005. Salt tolerance and salinity effects on plants: a review. – Ecotoxicol. Environ. Saf. 60: 324-349. [DOI:10.1016/j.ecoenv.2004.06.010]
18. Seo, M., Aoki, H., Koiwai, H., Kamiya, Y., Nambara, E. and Koshiba, T. 2004. Comparative studies on the Arabidopsis aldehyde oxidase (AAO) gene family revealed a major role of AAO3 in ABA biosynthesis in seeds. – Plant Cell Physiol. 45: 1694-1703. [DOI:10.1093/pcp/pch198]
19. Shanker, A.K. and Venkateswarlu, B. 2011. Abiotic stress response in plants- physiological, bioche-mical and genetic perspectives. – InTech, pp, 5-10.
20. Sohani, M.M. 2005. Role of hemomucin like genes in Arabidopsis thaliana. – Ph.D dissertation, Adelaide University, Adelaide, Australia.
21. Sohani, M.M, Schenk, P., Schultz, C.J. and Schmidt, O. 2009. Phylogenetic and transcriptional analysis of a strictosidine synthase-like gene family in Arabid-opsis thaliana reveals involvement in plant defence responses. – Plant Biol. 11: 105-117. [DOI:10.1111/j.1438-8677.2008.00139.x]
22. The Arabidopsis Genome Initiative. 2000. Analysis of the genome sequence of the flowering plant Arab-idopsis thaliana. Nature 408: 796-815. [DOI:10.1038/35048692]
23. Turchetto-Zolet, A.C., Margis-Pinheiro, M. and Margis, R. 2009. The evolution of pyrroline-5-carboxylate synthase in plants: a key enzyme in proline synthesis. – Mol. Genet. Genomics 281: 87-97. [DOI:10.1007/s00438-008-0396-4]
24. Tuteja, N. 2007. Mechanisms of high salinity tolerance in plants. – Methods in Enzymol. 428: 419-438. [DOI:10.1016/S0076-6879(07)28024-3]
25. Wang, Z.Y., Gehring, C., Zhu, J., Li, F.M., Zhu, J.K., and Xiong, L. 2015. The Arabidopsis vacuolar sorting receptor1 is required for osmotic stress-in-duced abscisic acid biosynthesis. – Plant Physiol. 167: 137-152. [DOI:10.1104/pp.114.249268]
26. Xin, S., Yu, G., Sun, L., Qiang, X., Xu, N. and Cheng, X. 2014. Expression of tomato interacts with target pr-oteins. – J. Plant Res. 127: 695-708. [DOI:10.1007/s10265-014-0658-7]
27. Xiong, L., Lee, B.H., Ishitani, M., Lee, H., Zhang, C. and Zhu, J.K. 2001. FIERY1 encoding an inositol polyphosphate 1-phosphatase is a negative regulator of abscisic acid and stress signaling in Arabidopsis. – Genes Dev. 15: 1971-1984. [DOI:10.1101/gad.891901]
28. Zhao, J. 2011. The Mechanism of the silencing of a transgene, NCED3-LUC, in Arabidopsis thaliana. – Ph.D dissertation, King Abdullah University of Science and Technology. 51 pp.
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License.
کلیه حقوق این وب سایت متعلق به یافته های نوین در علوم زیستی است.
طراحی و برنامه نویسی : یکتاوب افزار شرق
© 2015 All Rights Reserved | Nova Biologica Reperta
Designed & Developed by : Yektaweb